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飼料—粗蛋白含量的測(cè)定—?jiǎng)P氏法 1 范圍
本方法規(guī)定了飼料中粗蛋白含量的測(cè)定。
本方法適用于配合飼料、濃縮飼料和單一飼料。
2 引用標(biāo)準(zhǔn)
GB601 化學(xué)試劑滴定分析用標(biāo)準(zhǔn)溶液的制備
3 原理
在催化劑作用下,用硫酸破壞有機(jī)物,使含氮物轉(zhuǎn)化成硫酸銨。加入強(qiáng)堿進(jìn)行蒸餾使氨逸出,用硼酸吸收液吸收后,再用鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定。測(cè)出氮含量,將結(jié)果乘以換算系數(shù)6.25,計(jì)算出粗蛋白的含量。
4 試劑
分析中,除另有說明外,僅使用化學(xué)純的試劑和蒸餾水或與其純度相當(dāng)?shù)乃?br />
4.1 硫酸, ρ約1.84g/mL
4.2 混合催化劑
稱取0.4g 硫酸銅(CuSO4·5H2O), 6g 硫酸鉀或硫酸鈉,磨碎混勻。
4.3 氫氧化鈉溶液,400g/L
4.4 硼酸溶液,20g/L
4.5 混合指示劑溶液
甲基紅乙醇溶液(1g/L),溴甲酚綠乙醇溶液(5g/L),兩溶液等體積混合,在陰涼處保存期為三個(gè)月。
4.6 鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液,c(HCl)=0.1mol/L、0.02mol/L
4.6.1 配制c(HCl)=0.1mol/L
移取8.3mL 鹽酸(分析純),于1000mL 容量瓶中,用水稀釋至刻度,混勻。此溶液為c(HCl)=0.1mol/L。
4.6.2配制c(HCl)=0.02mol/L
移取1.67mL 鹽酸(分析純),于1000mL 容量瓶中,用水稀釋至刻度,混勻。此溶液為c(HCl)=0.02mol/L。
4.7 蔗糖,分析純
4.8 硫酸銨,分析純,干燥
4.9 硼酸吸收液
于1000mL 硼酸水溶液(10g/L)中加入10mL 溴甲酚綠乙醇溶液(1g/L),7mL 甲基紅乙醇溶液(1g/L), 0.5mL 氫氧化鈉水溶液(40g/L),混勻,置陰涼處保存期為一個(gè)月(全自動(dòng)程序用)。
5 儀器設(shè)備
5.1 實(shí)驗(yàn)室用樣品粉碎機(jī)或研缽
5.2 分樣篩,孔徑0.45mm(40 目)
5.3 分析天平,感量0.0001g
5.4 消煮爐或電爐
5.5 滴定管,酸式,10、25mL
5.6 凱氏燒瓶,250mL
5.7 凱氏蒸餾裝置,常量直接蒸餾式或半微量水蒸氣蒸餾式
5.8 錐形瓶,150、250mL
5.9 容量瓶,100mL
5.10 消煮管,250mL
5.11 定氮儀,以凱氏原理制造的各類型半自動(dòng),全自動(dòng)蛋白質(zhì)測(cè)定儀
6 試樣制備
選取具有代表性的試樣用四分法縮減至200g,粉碎后全部通過0.45mm(40 目篩),裝于密封容器中, 防止試樣成分的變化。
7 操作步驟
7.1 仲裁法
7.1.1 試樣的消煮
稱取試料0.5~1g(含氮量5~80mg)準(zhǔn)確至0.0002g,放入凱氏燒瓶中,加入6.4g 混合催化劑,與試樣混合均勻,再加入12mL 硫酸和2 粒玻璃珠,將凱氏燒瓶置于電爐上加熱,開始小火,待樣品焦化,泡沫消失后,再加強(qiáng)火力(360~410℃)直至呈透明的藍(lán)綠色,然后再繼續(xù)加熱,至少2h。
7.1.2 氨的蒸餾
7.1.2.1 常量蒸餾法
將試料消煮液冷卻,加入60~100mL 蒸餾水,搖勻,冷卻。將凱氏蒸餾裝置的冷凝管末端浸入裝有25mL 硼酸吸收液(20g/L)和2 滴混合指示劑溶液的錐形瓶?jī)?nèi)。然后小心地向凱氏燒瓶中加入50mL 氫氧化鈉溶液(400g/L),輕輕搖動(dòng)凱氏燒瓶,使液溶混勻后再加熱蒸餾,直至流出液體積為100mL。降下錐瓶,使冷凝管末端離開液面,繼續(xù)蒸餾1~2min,并用蒸餾水沖洗冷凝管末端,洗液均需流入錐形瓶?jī)?nèi), 然后停止蒸餾。
7.1.2.2 半微量蒸餾法將試樣消煮液冷卻,加入20mL 蒸餾水,轉(zhuǎn)入100mL 容量瓶中,冷卻后用水稀釋至刻度,搖勻,做為試料分解液。將半微量蒸餾裝置的冷凝管末端浸入裝有20mL 硼酸吸收液(20g/L)和2 滴混合指示劑溶液的錐形瓶?jī)?nèi)。蒸汽發(fā)生器的水中應(yīng)加入甲基紅指示劑數(shù)滴,硫酸數(shù)滴,在蒸餾過程中保持此液為橙紅色, 否則需補(bǔ)加硫酸。準(zhǔn)確移取10~20mL 試料分解液注入凱氏蒸餾裝置的反應(yīng)室中,用少量蒸餾水沖洗進(jìn)樣入口,塞好入口玻璃塞,再加10mL 氫氧化鈉溶液(400g/L),小心提起玻璃塞使之流入反應(yīng)室,將玻璃塞
塞好,且在入口處加水密封,防止漏氣。蒸餾4min,降下錐形瓶,使冷凝管末端離開吸收液面,再蒸餾1min,用蒸餾水沖洗冷凝管末端,洗液均流入錐形瓶?jī)?nèi),然后停止蒸餾。
注:7.1.2.1 和7.1.2.2 蒸餾法測(cè)定結(jié)果相近,可任選一種。
7.1.2.3 蒸餾步驟的檢驗(yàn)
準(zhǔn)確稱取0.2g 硫酸銨,代替試料,按7.1.2 或7.2.2 步驟進(jìn)行操作,測(cè)得硫酸銨的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為21.19± 0.2%,否則應(yīng)檢查加堿、蒸餾和滴定各步驟是否正確。
7.1.3 滴定
用7.1.2.1 或7.1.2.2 法蒸餾后的吸收液立即用鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.1mol/L 或0.02mol/L)滴定,溶液由藍(lán)綠色變成灰紅色為終點(diǎn)。
7.2 推薦法
7.2.1 試樣的消煮
稱取0.5~1g 試料(含氮量5~80mg)準(zhǔn)確至0.0002g,放入消化管中,加2 片消化片(儀器自備)或6.4g 混合催化劑,12mL 硫酸,于420℃下在消煮爐上消化1h。取出放涼后加入30mL 蒸餾水。
7.2.2 氨的蒸餾
采用全自動(dòng)定氮儀時(shí),按儀器本身常量程序進(jìn)行測(cè)定。
采用半自動(dòng)定氮儀時(shí),將帶消化液的管子插在蒸餾裝置上,以25mL 硼酸溶液(20g/L)為吸收液,加入2 滴混合指示劑溶液,凱氏蒸餾裝置的冷凝管末端要浸入裝有吸收液的錐形瓶?jī)?nèi),然后向消煮管中加入50mL 氫氧化鈉溶液(400g/L)進(jìn)行蒸餾。蒸餾時(shí)間以吸收液體積達(dá)到100mL 時(shí)為宜。降下錐形瓶,用蒸餾水沖洗冷凝管末端,洗液均需流入錐形瓶?jī)?nèi)。
7.2.3 滴定
用標(biāo)準(zhǔn)鹽酸溶液(0.1mol/L)滴定吸收液,溶液由藍(lán)綠色變成灰紅色為終點(diǎn)。
8 空白測(cè)定
稱取0.5g 蔗糖,代替試料,按第7 章進(jìn)行空白測(cè)定,消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.1mol/L)的體積不得超過0.02mL。消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.02mol/L)體積不得超過0.3mL。
9 結(jié)果計(jì)算
按下式計(jì)算粗蛋白質(zhì)的質(zhì)量分?jǐn)?shù):
粗蛋白質(zhì)(%)=0.0140×6.25×100V(V2-V1)C/MV/
式中:V2——滴定試樣時(shí)所需標(biāo)準(zhǔn)酸溶液體積,mL;
V1——滴定空白時(shí)所需標(biāo)準(zhǔn)酸溶液體積,mL;
C ——鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度,mol/L;
m ——試樣質(zhì)量,g;
V ——試樣分解液總體積,mL;
V′——試樣分解液蒸餾用體積,mL;
0.0140——與1.00mL 鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液[c(HCl)=1.000mol/L]相當(dāng)?shù)摹⒁钥吮硎镜牡馁|(zhì)量。
6.25——氮換算成蛋白質(zhì)的平均系數(shù)。
10 精密度
每個(gè)試樣取兩個(gè)平行樣進(jìn)行測(cè)定,以其算術(shù)平均值為結(jié)果。
當(dāng)粗蛋白質(zhì)含量在25%以上時(shí),允許相對(duì)偏差為1%。
當(dāng)粗蛋白質(zhì)含量在10%~25%之間時(shí),允許相對(duì)偏差為2%。
當(dāng)粗蛋白質(zhì)含量在10%以下時(shí),允許相對(duì)偏差為3%。
11 參考文獻(xiàn)
GB/T 6432-94 飼料中粗蛋白測(cè)定方法
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